conservation des spécimens morts

Section pour aborder toutes les questions concernant le matériel utilisé pour les récoltes et les identifications (tubes, alcool, méthodes de captures, binoculaire...)
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Hugo Darras
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conservation des spécimens morts

Message par Hugo Darras » sam. 24 mai 2008 18:30

L'objectif est d'aller assez rapidement sur des fourmis de toutes tailles, tout en dégageant bien les zones d'intérêt taxonomique.
La fourmi regarde à gauche par convention, triangle collé entre le 2ème et le 3ème coxae, et le thorax est bien dégagé
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Stockage en alcool
Je tue dans de l'alcool quelconque.
En rentrant de chasse, je change l'alcool qui n'est plus bon à les conserver sur le long terme. J'utilise de l'alcool pur à 70-90° dans de petits tubes étanches (microtubes, tubes eppendorfs…disponible chez les fournisseurs de laboratoire, commande groupée possible)
En théorie :
- 70° permettra d'avoir des spécimens aux appendices plus flexibles, mais difficiles à poser
- 90° permettra d'avoir des spécimens aux appendices plus rigides, mais cassants.

microtubes et tube eppendorf
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Préparation d'une Messor structor

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Elle se fait sous une binoculaire. J'utilise pour positionner les appendices des épingles entomologiques très fines et flexibles: n°000 (le plus facile est de s'en procurer lors d'une bourse entomologique) et pour le support une plaque fine de polystyrène expansé (recupération d'emballage d'électroménager)
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- La fourmi est sur le dos, je la déplie et la cale bien avec deux épingles horizontales: au niveau de la tête et du pétiole.
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- avec une épingle horizontale je surélève les pattes de droite pour que le thorax soit bien dégagé sur le montage final. Je fais éventuellement la même chose à gauche.
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- avec des épingles verticales, j'écarte les pattes 2 et 3 de gauche pour pouvoir glisser mon triangle ensuite.
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- éventuellement, des épingles pour disposer les antennes et une épingle plantée entre les mandibules pour les écarter.
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Après une journée au sec, j'enlève la majorité des épingles
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Montage de la fourmi sur un triangle

En France, on ne trouve pas de triangle vraiment adapté au montage de fourmis. J'utilise donc des triangles de 14mm x 7mm (bourse entomologique), que je coupe en deux dans le sens de la longueur, ce qui donne des triangles satisfaisants, éventuellement raccourcissables. Éventuellement du bristol peut faire l'affaire

triangle trop obtu/ triangle 14*7/ épingle avec un triangle 14*7 coupé en deux
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Je met le triangle à 1 cm de hauteur sur une épingle entomologique n°3. (c'est ce qui m'est le plus pratique pour le collage) Une quantité infime de vernis à ongle (ou colle à bois, mais elle sèche plus lentement et est plus fragile) est mise sur le bout du triangle.
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La fourmi est sur le dos, j'enfonce l'epingle qui supporte le triangle vernis dans le polystyrène jusqu'a ce qu'elle occupe la place souhaitée (entre le 2ème et le 3ème coxae)
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Vernis sec en deux minutes.
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Je retourne le triangle sur l'épingle et c'est finit.
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Résultat:
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LIENS WEB UTILES

Preparations
http://www.evergreen.edu/ants/HOWTOMOUNTANTS/mount.html how to mount ants [evergreen]
http://www.ento.csiro.au/science/ants/preparation.htm Preparing Ants for Study [ento.csiro.]
http://www.carleton.edu/curricular/BIOL ... NNING.html Preparing and Pointing Ants: A Crash Course

Techniques macrophoto pour fourmis/coléoptères
pour maitriser les reflets cuticulaires ;)

http://www.anttypes.org/publications/im ... nsects.pdf Digital Imaging of Beetles (Coleoptera)
http://insects.oeb.harvard.edu/MCZ/PDFs ... tizing.pdf A Guide to Digitizing Insect Collections

http://www.notesfromunderground.org/arc ... tures.html High Resolution Macro Photography [NFU]
http://www.ameisen-net.de/index.php?id=500 Tipps für gute Makroaufnahmen

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Re: conservation des spécimens morts [tutoriel]

Message par Ludwig Renouf » lun. 26 mai 2008 16:25

Merci pour ce tuto, c'est très interessant !
Je commence un peu dans l'entomologie, alors savoir préparer des fourmis va m'être utile :D .

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Re: conservation des spécimens morts [tutoriel]

Message par Hugo Darras » mar. 14 oct. 2008 00:02

Pour référence, techniques de préparations avancées :

- Advances in insect preparation: bleaching, clearing and relaxing ants (Hymenoptera: Formicidae)
Stüben, M. & Linsenmair, K.E. , 2008
:arrow: http://www.myrmecologicalnews.org/cms/i ... ntable.pdf

- A methode for preparing slide mounted specimens of ant male genitalia
K. Eguchi, 2002, Anet Newsletter n°4 page 26-27
:arrow: http://homepage.mac.com/dorylus/Resources/No4.pdf

- Ants: Standard Methods for Measuring and Monitoring Biodiversity / Specimen processing: building and curating an ant collectionAuthors: Lattke, J. E.
:arrow: http://antbase.org/ants/publications/20341/20341.pdf

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Re: conservation des spécimens morts [tutoriel]

Message par Hugo Darras » jeu. 6 nov. 2008 13:23

- Recommendations on the use of alcohols for preservation of ant specimens (Hymenoptera, Formicidae), J.R. King and S.D. Porter, Insectes Sociaux 51, 2004
http://www.ars.usda.gov/sp2UserFiles/Pl ... -3886).pdf

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Re: conservation des spécimens morts

Message par Hugo Darras » jeu. 6 nov. 2008 13:34

Je remercie Xavier Espadaler pour ses conseils :
Voici un aperçu de la manière dont il procède pour la conservation de tubes en alcool :

La conservation est faite dans de l'alcool à 70°. Les étiquettes sont réalisées à l'aide d'une imprimante laser HP sur papier de bonne qualité. Aucune dégradation de l'impression n'a été observée sur des étiquettes de 8 ans.

enfin les tubes sont immergés dans un bocal d'alcool pour éviter l'évaporation. Le bocal de la photo suivante n'est pas encore remplit :
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Il précise également de faire attention à la conservation des spécimens dans l'obscurité pour éviter les décolorations.

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Re: conservation des spécimens morts

Message par David Ignace » dim. 9 nov. 2008 16:43

Bonjour à tous ,

Et bien moi pour ma collection en alcool j'utilise de petites fioles en verre avec un capuchon en caoutchouc.
Les fioles sont remplient d'alcool à 70° non dénaturé. Je place les fourmis et l'alcool dans la fiole ensuite je met le capuchon et je fais le vide d'air dans la fiole. Chaque fiole est numérotée et porte une étiquette pour le référencement. Toutes mes fioles sont dans une boite à l'obscurité. Cela fait un peu plus d'un an que j'ai commencé et je n'ai pas remarqué d'évaporation ni de décoloration sauf peut être sur les Lasius jaunes "L.flavus".
Enfin voilà.
david
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Re: conservation des spécimens morts

Message par David Ignace » dim. 9 nov. 2008 21:28

Et voici pour la collection sèche comment je procède :

C'est le même principe que la méthode Hugo sauf qu'au lieu de coller la fourmi je la monte sur une minutie.
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David ;)

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Re: conservation des spécimens morts

Message par Jean-Luc Marrou » dim. 16 nov. 2008 21:06

A David et Hugo,
Merci pour ces précisions enseignantes.
La Méthode de Xavier demande beaucoup d'alcool, je trouve. N'y a t-il pas la possibilité de remplacer l'alcool 70° du bocal par de l'eau ou un autre liquide moins honéreux ? Sachant que l'objectif est de pallier à l'évaporation.

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Re: conservation des spécimens morts

Message par Théotime Colin » dim. 25 janv. 2009 19:57

Il risquerait alors d'y avoir un mélange avec l'autre liquide, et on perdrait les 70° de notre alcool.

Peut-être en complétant par un solide, du genre billes de plastique ou de verre, ça ferait gagner du volume.

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Re: conservation des spécimens morts

Message par Jean-Luc Marrou » dim. 25 janv. 2009 23:31

Théotime Colin a écrit :Il risquerait alors d'y avoir un mélange avec l'autre liquide, et on perdrait les 70° de notre alcool.

Peut-être en complétant par un solide, du genre billes de plastique ou de verre, ça ferait gagner du volume.
Théotime, si tu réponds à mon intervention, je ne pense pas. Si les tubes sont bien hermétiques et bien fermés, il peut pas y avoir de mélange, par contre ton idée de rajouter des petits éléments solides est intéressante, c'est une piste.

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